|
1. Kaczmarczyk D. 2005.
Możliwości szacowania zmienności genetycznej w obrębie populacji oraz
dystansu genetycznego pomiędzy populacjami wiosłonosa amerykańskiego na
podstawie polimorfizmu mikrosatelitarnego DNA W: Rozród,
podchów , profilaktyka ryb sumokształtnych i
innych gatunków, s. 181-187. Wydawnictwo IRS, Olsztyn, 240 str.
|
|
|
|
2. Kaczmarczyk D. 2007.
Ocena polimorfizmu genetycznego wybranych stad rozrodczych wiosłonosa
amerykańskiego (Polyodon spathula Walbaum 1849) na podstawie sekwencji mikrosatelitarnego DNA: Praca doktorska, Uniwersytet
Warmińsko Mazurski w Olsztynie, Wydział Ochrony Środowiska i Rybactwa,
Olsztyn, 125 str.
|
|
|
|
|
3. Kaczmarczyk D., Kohlmann K., Kersten P., Luczynski M. 2007. Polymorphism of
microsatellite loci - a new tool in studying biodiversity of paddlefish
aquaculture broodstock. Environmental Biotechnology 3: 44-48.
|
|
|
|
|
4. Kaczmarczyk D., Kolman R., Łuczyński M. Tretiak
A. M. 2008. Dobór par tarlaków na podstawie ich indywidualnych
charakterystyk genetycznych - nowe narzędzie w gospodarowaniu zasobami
wiosłonosa amerykańskiego. W: Aktualny stan i aktywna ochrona naturalnych
populacji ryb jesiotrowatych zagrożonych wyginięciem, s. 211-221.
Wydawnictwo IRS, Olsztyn, 310 str.
|
|
|
|
|
5. Kaczmarczyk D. 2008.
Zastosowanie metod obliczania efektywnej wielkości stad oraz doboru
tarlaków do rozrodu na podstawie indywidualnych charakterystyk
genetycznych. W: Elementy nowoczesnej akwakultury ryb, inkubacja ikry i
profilaktyka (red. Łuczyński M., Szczerbowski A., Szkudlarek M. ) s. 77-90.
Wydawnictwo IRS, Olsztyn, 222 str.
|
|
|
|
|
6. Łuczyński M.,
Burzyński A., Ocalewicz K., Kowalski R., Jankun M., Hliwa P.,
Kaczmarczyk D. 2011. Androgeneza jako możliwość
ochrony i odnowy populacji I gatunków ryb. W: Trendy w biotechnologii
środowiskowej (red. Wojnowska-Baryła, s. 230-248. Wydawnictwo UWM w
Olsztynie, Olszyn, 255 str.
|
|
|
|
|
7. Kaczmarczyk D. Zuchowska
E. 2011. Genetic diversity of two lake minnow, Eupallasella percnurus
(Pall. ) populations based on microsatellite DNA polymorphism. Archives of Polish Fisheries 19: 145-152.
https://doi.org/10.2478/v10086-011-0018-3
|
|
|
|
|
8. Kaczmarczyk D., Luczynski M., Brzuzan P.
2012. Genetic variation of three paddlefish (Polyodon spathula) stocks based on
microsatellite DNA. Czech Journal of Animal Sciences 8:
345-352.
https://doi.org/10.17221/6269-CJAS
|
|
|
|
|
9. Kaczmarczyk D., Fopp-Bayat D. 2013. Assemblage of spawning
pairs based on their individual genetic profiles - as tool for maintaining genetic
variation within sturgeon populations. Aquaculture Research 44: 677-682
https://doi.org/10.1111/j.1365-2109.2011.03064.x
|
|
|
|
|
10. Kaczmarczyk D. 2013. Cross-species amplification
of selected zebrafish, central stoneroller, and finescale dace microsatellites in lake minnow. Genetics and Molecular Research 12: 154-159
https://doi.org/10.4238/2013.January.24.7
|
|
|
|
|
11. Aksoy Serap, Almeida-Val, Vera
Maria F., Azevedo, V. C. R.; Kaczmarczyk
D., Gadomski M.. et al 2013. Microsatellite markers for
the lake minnow (Eupallasella percnurus)
Molecular Ecology Resources 13: 341-343
|
|
|
|
|
12. Ciesielski S.,
Bułkowska K., Dabrowska D., Kaczmarczyk D., Kowal
P., Możejko J. 2013. RISA as a tool for monitoring of methanogenic Archaea changes
in anaerobic fermentor. 67:240-248
https://doi.org/10.1007/s00284-013-0353-2
|
|
|
|
|
13. Kaczmarczyk D., Kaczor
A. 2013. New multiplex PCR assays for estimating genetic diversity in
rainbow trout (Oncorhynchus mykiss)
by polymorphism of microsatellite DNA Environmental Biotechnology 9: 19-24
|
|
|
|
|
14. Piasecka A., Brzuzan P., Woźny M., Ciesielski S., Kaczmarczyk D.
2015. Splice-acceptor site mutation in p53 gene of hu888 zebrafish line. Journal
of Applied Genetics 56: 115-121
https://doi.org/10.1007/s13353-014-0239-4
|
|
|
|
|
15. Kaczmarczyk D. 2015. Genassemblage software, a tool for management of
genetic diversity in human dependent population. Conservation Genetic Resources 7:49-51
https://doi.org/10.1007/s12686-014-0356-8
|
|
|
|
|
16. Fopp-Bayat
D. Kaczmarczyk D, Szczepkowski M. 2015. Genetic characteristics of
Polish whitefish (Coregonus lavaretus maraena) broodstocks -
recommendations for the conservation management. Czech Journal of Animal Science 4: 171-177.
https://doi.org/10.17221/8131-CJAS
|
|
|
|
|
17. Wolnicki
J., Kamiński R., Sikorska J., Kaczmarczyk D., Radtke G. 2015. Czynna
ochrona zagrożonego gatunku z użyciem materiału zarybieniowego w warunkach
kontrolowanych na przykąldzie strzebli blotnej (Eupallasella percnurus). W: Podchowy organizmow
wodnnych - osiągniecia,
wyzwania, perspektywy. (red. Zakęś Z., Demska-Zakęs K., Kowalska A.) s. 341-350. Wydawnictwo
IRS, Olsztyn,365 str.
|
|
|
|
|
18. Kaczmarczyk D., Fopp-Bayat D. Wiśniewska A. 2015. Selection of
optimal spawner-pairs based on the polymorphism
of microsatellite loci in a partially-tetraploid
fish species (Coregonus lavaretus).
Environmental Biotechnology 11: 20-25.
https://doi.org/10.14799/ebms255
|
|
|
|
|
19. Kaczmarczyk D. 2016. Selection of
optimal set of spawner-pairs Amreican
paddlefish (Polyodon spathula)
based on the polymorphism of microsatellite loci. Archives of Polish Fisheries 24: 77-84.
https://doi.org/10.1515/aopf-2016-0009
|
|
|
|
|
20. Kaczmarczyk D., Wolnicki
J. 2016. Genetic diversity of the endangered cyprinid fish lake minnow Eupallasella percnurus in
Poland and its implications for conservation. PLOS One 11(12) 1:16
https://doi.org/10.1371/journal.pone.0168191
|
|
|
|
|
21. Kaczmarczyk, D.,
Dobosz, S. and Kaczor, A. 2017. Prediction of Genetic Variation in Stocks
of Offspring and Its Correlation with Viability and Growth Rate. Journal of World Aquaculture Society, 48:
802-809.
https://doi.org/10.1111/jwas.12396
|
|
|
|
|
22. Kaczmarczyk D. 2019. Techniques based
on the polymorphism of microsatellite DNAas tools
for conservation of endangered populations. Applied Ecology and Environmental
Research 17(2): 1599-1615.
https://doi.org/10.15666/aeer/1702_15991615
|
|
|
|
|
23. Stachura A., Bojarojc-Nosowicz B., Kaczmarczyk D., Kaczmarczyk E.
2019. T(-1646)G and (CA)n16512 and T(16534)C polymorphism in the bovine tumour necrosis factor receptor type two gene and cell
subpopulations naturally infected with the bovine leukaemia
virus. Journal of Veterinery Research 63(2): 175-182.
https://doi.org/10.2478/jvetres-2019-0032
|
|
