44. Żelazna, K. 2009. Ocena mutagenności fenylofenantrenów metodą testu Amesa. Wydział Ochrony Środowiska i Rybactwa, Uniwersytet Warmińsko Mazurski w Olsztynie.
43. Piątek, K. 2008. Wykorzystanie testu Amesa do określenia aktywności mutagennej izomerów benzobisbenzotiofenu. M. Łuczyński, Wydział Ochrony Środowiska i Rybactwa, Uniwersytet Warmińsko-Mazurski w Olsztynie i M. Góra, Wydział Chemii, Uniwersytet Jagielloński.
42. Kubiak, K. 2008. Charakterystyka genetyczna pięciu stad tarłowych śledzia bałtyckiego (Clupea harengus) na podstawie badań polimorfizmu białek enzymatycznych. Wydział Ochrony Środowiska i Rybactwa, Uniwersytet Warmińsko Mazurski w Olsztynie.
41. Pietrzykowski, J.P. 2008. Ocena aktywności mutagennej wybranych fenolowych pochodnych naftotiofenu metodą testu Amesa. M. Łuczyński, Wydział Ochrony Środowiska i Rybactwa i M.K. Łuczyński, Wydział Kształtowania Środowiska i Rolnictwa, Uniwersytet Warmińsko Mazurski w Olsztynie.
40. Klinkosz, E. 2008. Charakterystyka nasienia ogierów przechowywanego krótkookresowo w komercyjnym rozcieńczalniku. M. Łuczyński, Katedra Biotechnologii w Ochronie Środowiska i J. Glogowski, Katedra Ichtiologii, Wydział Ochrony Środowiska i Rybactwa, Uniwersytet Warmińsko-Mazurski w Olsztynie.
39. Norowski, M. 2007. Wykorzystanie testu Amesa do określenia mutagenności podstawionych tetrahydrobenzo[c]fenantrenów. M. Góra, Wydział Chemii, Uniwersytet Jagielloński i M. Łuczyński, Wydział Ochrony Środowiska i Rybactwa, Uniwersytet Warmińsko-Mazurski w Olsztynie.
38. Matusik, M. 2006. Zmienność genetyczna stad rozrodczych sandacza (Sander lucioperca) Zalewu Wiślanego oszacowana na podstawie polimorfizmu genów kodujących 134 białek enzymatycznych. Wydział Ochrony Środowiska i Rybactwa, Uniwersytet Warmińsko Mazurski w Olsztynie.
37. Kudyba, K.M. 2006. Polimorfizm genów kodujących 13 białek enzymatycznych drewniaka (Lithobius forficatus). Wydział Ochrony Środowiska i Rybactwa, Uniwersytet Warmińsko Mazurski w Olsztynie.
36. Pirogowicz, P. 2006. Ocena mutagenności dwóch aminowych pochodnych cyklopenta[c]fenantrenu metodą testu Amesa. M.K. Łuczyński, Wydział Kształtowania Środowiska i Rolnictwa i M. Łuczyński, Wydział Ochrony Środowiska i Rybactwa, Uniwersytet Warmińsko Mazurski w Olsztynie.
35. Piotrowska, E.T. 2003. Charakterystyka genetyczna dwóch populacji Strigamia maritima (Leach, 1817) (Chilopoda: Geophilomorpha) badana metodą elektroforetycznego rozdziału dziesięciu białek enzymatycznych. Wydział Biologii, Uniwersytet Warmińsko Mazurski w Olsztynie.
34. Kwiatkowski, M. A. 2003. Identyfikacja osobników łososia (Salmo salar), troci wędrownej (Salmo trutta m. trutta) oraz ich hybrydów F1 na podstawie mikrosatelitarnego DNA. Wydział Ochrony Środowiska i Rybactwa, Uniwersytet Warmińsko Mazurski w Olsztynie.
33. Szczęsnowicz, D. 2000. Androgenetyczny rozwój pstrąga źródlanego (Salvelinus fontinalis) i palii (Salvelinus alpinus) w oocytach pstrąga źródlanego oraz androgenetyczny rozwój troci (Salmo trutta) i łososia (Salmo salar) w oocytach troci. ). I. Babiak, Wydział Bioinżynierii Zwierząt i M. Łuczyński, Wydział Ochrony Środowiska i Rybactwa, Uniwersytet Warmińsko Mazurski w Olsztynie.
32. Perkowski, J. 2000. Kriokonserwacja plemników i indukcja rozwoju gynogenetycznego u karasia złocistego (Carassius auratus auratus). I. Babiak, Wydział Bioinżynierii Zwierząt, M. Łuczyński, Wydział Ochrony Środowiska i Rybactwa, Uniwersytet Warmińsko Mazurski w Olsztynie.
31. Samet, M. 1999. Próby konstrukcji systemów identyfikacyjnych lipienia europejskiego (Thymallus thymallus) i lipienia arktycznego (Thymallus arcticus) opartych o techniki genetyki molekularnej. J. Kur, Wydział Chemiczny, Politechnika Gdańska, M. Łuczyński, Wydział Ochrony Środowiska i Rybactwa, Akademia Rolniczo-Techniczna w Olsztynie.
30. Kuźniar, P. 1997. Uzyskiwanie triploidalnego wylęgu szczupaka (Esox lucius L.) metodą poddania zaplemnionych jaj szokowi termicznemu. Wydział Ochrony Środowiska i Rybactwa, Akademia Rolniczo-Techniczna w Olsztynie.
29. Liss, W. 1996. Optymalizacja procesu genetycznej inaktywacji plemników szczupaka (Esox lucius L.) przy użyciu promieniowania ultrafioletowego. Wydział Ochrony Wód i Rybactwa Śródlądowego, Akademia Rolniczo-Techniczna w Olsztynie.
28. Mieczkowski, R. 1996. Wywoływanie sztucznej gynogenezy szczupaka, Esox lucius, poprzez zastosowanie wczesnego i późnego szoku termicznego. Wydział Ochrony Wód i Rybactwa Śródlądowego, Akademia Rolniczo-Techniczna w Olsztynie.
27. Dajnowicz, G. 1996. Chromosomowa determinacja płci szczupaka (Esox lucius L.). Wydział Ochrony Wód i Rybactwa Śródlądowego, Akademia Rolniczo-Techniczna w Olsztynie.
26. Kamiński, M. 1995. Biochemiczna charakterystyka genetyczna populacji pstrąga źródlanego, Salvelinus fontinalis. Wydział Ochrony Wód i Rybactwa Śródlądowego, Akademia Rolniczo-Techniczna w Olsztynie.
25. Bartos, A. 1995. Biochemiczna charakterystyka genetyczna karpia kolorowego Koi (Cyprinus carpio). Wydział Ochrony Wód i Rybactwa Śródlądowego, Akademia Rolniczo-Techniczna w Olsztynie.
24. Stark, T. 1995. Biochemiczna charakterystyka genetyczna dwóch populacji karpia (Cyprinus carpio L.). Wydział Ochrony Wód i Rybactwa Śródlądowego, Akademia Rolniczo-Techniczna w Olsztynie.
23. Kunachowicz, W. 1994. Zmienność genetyczna populacji leszcza (Abramis brama L.) w Sulejowskim Zbiorniku Zaporowym. M. Zalewski, Zakład Ekologii Stosowanej Uniwersytetu Łódzkiego, M. Łuczyński, Katedra Podstawowych Nauk Rybackich, Wydział Ochrony Wód i Rybactwa Śródlądowego, Akademia Rolniczo Techniczna w Olsztynie.
22. Szczepański, J. 1994. Biometryczna i genetyczna charakterystyka dwóch populacji szczupaka (Esox lucius L.). Wydział Ochrony Wód i Rybactwa Śródlądowego, Akademia Rolniczo-Techniczna w Olsztynie.
21. Najmoła, M. 1994. Badania genetyczne minoga rzecznego (Lampetra fluviatilis) z Zalewu Wiślanego i Rzeki Grabowej. Wydział Ochrony Wód i Rybactwa Śródlądowego, Akademia Rolniczo-Techniczna w Olsztynie.
20. Nawrocki, T. 1994. Chromosomowa i biochemiczna charakterystyka genetyczna dwóch gatunków tilapii (Oreochromis mossambicus L. i Oreochromis niloticus L.). Wydział Ochrony Wód i Rybactwa Śródlądowego, Akademia Rolniczo-Techniczna w Olsztynie.
19. Bulkowski, K. 1994. Biochemiczna charakterystyka genetyczna dwóch populacji suma europejskiego (Silurus glanis L.). Wydział Ochrony Wód i Rybactwa Śródlądowego, Akademia Rolniczo-Techniczna w Olsztynie.
18. Grabiak, T. 1993. Badania genetyczne siei (Coregonus lavaretus) i sielawy (Coregonus albula) z jeziora Ukiel. Wydział Ochrony Wód i Rybactwa Śródlądowego, Akademia Rolniczo-Techniczna w Olsztynie.
17. Woźnicki, P. 1993. Chromosomy łososia (Salmo salar) z rzeki Dźwiny. Wydział Ochrony Wód i Rybactwa Śródlądowego, Akademia Rolniczo-Techniczna w Olsztynie.
16. Mackiewicz, J. 1992. Wczesna ontogeneza trzech gatunków ryb siejowatych (siei, sielawy i pelugi) oraz ich wzajemnych hybrydów. Wydział Ochrony Wód i Rybactwa Śródlądowego, Akademia Rolniczo-Techniczna w Olsztynie.
15. Babiak, I. 1992. Rozród i charakterystyka genetyczna tilapii (Oreochromis niloticus L.). Wydział Ochrony Wód i Rybactwa Śródlądowego, Akademia Rolniczo-Techniczna w Olsztynie.
14. Krysiński, D. 1991. Wymagania tlenowe zarodków siei i sielawy w końcowym etapie rozwoju embrionalnego. Wydział Ochrony Wód i Rybactwa Śródlądowego, Akademia Rolniczo-Techniczna w Olsztynie.
13. Sokołowski, M. 1990. Aktywność choriolityczna płynu wyklucia siei (Coregonus lavaretus), sielawy (Coregonus albula) i pstrąga tęczowego (Salmo gairdneri). Wydział Ochrony Wód i Rybactwa Śródlądowego, Akademia Rolniczo Techniczna w Olsztynie.
12. Gołaś, T. 1989. Progowe koncentracje tlenu wywołujące bradykardię u zarodków Coregoninae (Coregonus lavaretus i C. albula). Wydział Ochrony Wód i Rybactwa Śródlądowego, Akademia Rolniczo Techniczna w Olsztynie.
11. Żółtowski, T. 1989. Aktywność choriolityczna płynu wyklucia Coregoninae. Wydział Ochrony Wód i Rybactwa Śródlądowego, Akademia Rolniczo Techniczna w Olsztynie.
10. Czerkies, P. 1989. Progowe koncentracje tlenu wywołujące przedwczesne wykluwanie się zarodków siei i sielawy. Wydział Ochrony Wód i Rybactwa Śródlądowego, Akademia Rolniczo Techniczna w Olsztynie.
9. Kordalski, K. 1988. Przedwczesna sekrecja chorionazy przez zarodki Coregoninae poddane oddziaływaniu hypoksji. Wydział Ochrony Wód i Rybactwa Śródlądowego, Akademia Rolniczo Techniczna w Olsztynie.
8. Żółkiewicz, L. 1987. Wpływ temperatury na rozwój reakcji optomotorycznej u larw sielawy i siei. Wydział Ochrony Wód i Rybactwa Śródlądowego, Akademia Rolniczo Techniczna w Olsztynie.
7. Dostatni, D. 1987. Wpływ temperatury na moment rozpoczęcia egzogennego odżywiania się wylęgu sielawy. Wydział Ochrony Wód i Rybactwa Śródlądowego, Akademia Rolniczo Techniczna w Olsztynie.
6. Korszuń, J. 1987. Rozwój reakcji optomotorycznej i odporności na presję drapieżników u larw Coregoninae (Coregonus albula, C. lavaretus, C. muksun.). Wydział Ochrony Wód i Rybactwa Śródlądowego, Akademia Rolniczo Techniczna w Olsztynie.
5. Kopecki, T. 1987. Rozwój larwalny Coregoninae. Wydział Ochrony Wód i Rybactwa Śródlądowego, Akademia Rolniczo Techniczna w Olsztynie.
4. Brzuzan, P. 1986. Aktywność proteolityczna i choriolityczna płynu wyklucia koregonidów. Wydział Ochrony Wód i Rybactwa Śródlądowego, Akademia Rolniczo Techniczna w Olsztynie.
3. Majkowski, P. 1985. Podchów wylęgu siei (Coregonus lavaretus), sielawy (C. albula), pelugi (C. peled) i muksuna (C. muksun) żywionego zooplanktonem i paszą granulowaną. Wydział Ochrony Wód i Rybactwa Śródlądowego, Akademia Rolniczo Techniczna w Olsztynie.
2. Dettlaff, J. 1985. Przesuwanie terminu wyklucia Coregoninae na różne stadia rozwoju embrionalnego. Wydział Ochrony Wód i Rybactwa Śródlądowego, Akademia Rolniczo Techniczna w Olsztynie.
1. Wojtaszek, W. 1983. Wpływ wiosennego ochładzania wody w procesie inkubacji jaj sielawy (Coregonus albula L.) na przeżywalność i morfologię wykluwających się embrionów. Wydział Ochrony Wód i Rybactwa Śródlądowego, Akademia Rolniczo Techniczna w Olsztynie.